Формирование амилоидоподобных конформационных состояний β-структурных мембранных белков на примере порина OmpF наружной мембраны Yersinia pseudotuberculosis

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В работе приведены результаты исследования in vitro и in silico процесса образования амилоидоподобных структур в жестких денатурирующих условиях неспецифическим порином OmpF Yersinia pseudotuberculosis (YpOmpF) – мембранным белком, имеющим конформацию β-бочонка. Показано, что для получения амилоидоподобных агрегатов порина необходима предварительная дестабилизация его структуры в буферном растворе с кислым значением pH при повышенной температуре c последующей длительной инкубацией при комнатной температуре. После нагревания при 95 °C в растворе с pH 4,5 в молекуле порина на уровне третичной и вторичной структуры белка наблюдаются существенные конформационные перестройки, которые сопровождаются увеличением содержания суммарной β-структуры и резким уменьшением величины характеристической вязкости раствора белка. Последующее длительное выдерживание полученного нестабильного интермедиата YpOmpF при комнатной температуре приводит к формированию разнообразных по форме и размерам агрегатов порина, связывающих тиофлавин Т (специфический флуоресцентный краситель для обнаружения амилоидоподобных белковых структур). Показано, что, по сравнению с исходным белком, ранние промежуточные продукты амилоидогенного пути порина, олигомеры, обладают повышенной токсичностью по отношению к клеткам нейробластомы мыши Neuro-2aCCL-131™. Результаты компьютерного моделирования и анализа изменения собственной флуоресценции при агрегации белка позволяют предположить, что при образовании амилоидоподобных агрегатов изменения в структуре YpOmpF затрагивают не только участки с внутренне неупорядоченной структурой, соответствующие наружным петлям порина, но и основной каркас молекулы, имеющий жесткую пространственную структуру, присущую β-бочонку.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

О. Д. Новикова

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Автор, ответственный за переписку.
Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

Т. В. Рыбинская

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

Е. А. Зелепуга

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

В. Н. Уверский

Университет Южной Флориды

Email: novolga_05@mail.ru
США, Тампа

Н. Ю. Ким

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

Е. А. Чингизова

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

Е. С. Менчинская

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

В. А. Хоменко

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

Д. К. Чистюлин

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: novolga_05@mail.ru
Россия, Владивосток

О. Ю. Портнягина

Тихоокеанский институт биоорганической химии ДВО РАН им. Г.Б. Елякова

Email: odd64@mail.ru
Россия, Владивосток

Список литературы

  1. Dobson, C. M. (2003) Protein folding and misfolding, Nature, 426, 884-890, https://doi.org/10.1038/nature02261.
  2. Chiti, F., and Dobson, C. M. (2006) Protein misfolding, functional amyloid, and human disease, Annu. Rev. Biochem., 75, 333-366, https://doi.org/10.1146/annurev.biochem.75.101304.123901.
  3. Ramirez-Alvarado, M., Merkel, J. S., and Regan, L. (2000) A systematic exploration of the influence of the protein stability on amyloid fibril formation in vitro, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 97, 8979-8984, https://doi.org/10.1073/pnas.15009179.
  4. Smith, D. P., Jones, S., Serpell, L. C., Sunde, M., and Radford, S. E. (2003) A systematic investigation into the effect of protein destabilization on beta 2-microglobulin amyloid formation, J. Mol. Biol., 330, 943-954, https://doi.org/ 10.1016/S0022-2836(03)00687-9.
  5. Sigurdsson, E. M., Wisniewski, T., and Frangione, B. (2002) Infectivity of amyloid diseases, Trends Mol. Med., 8, 411-413, https://doi.org/10.1016/S1471-4914(02)02403-6.
  6. Salahuddin, P., Fatima, M. T., Uversky, V. N., Khan, R. H., Islam, Z., and Furkan, M. (2021) The role of amyloids in Alzheimer’s and Parkinson’s diseases, Int. J. Biol. Macromol., 190, 44-55, https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac. 2021.08.197.
  7. Litvinovich, S. V., Brew, S. A., Aota, S., Akiyama, S. K., Haudenschild, C., and Ingham, K. C. (1998) Formation of amyloid-like fibrils by self-association of a partially unfolded fibronectin type III module, J. Mol. Biol., 280, 245-258, https://doi.org/10.1006/jmbi.1998.1863.
  8. Gross, M., Wilkins, D. K., Pitkeathly, M. C., Chung, E. W., Higham, C., Clark, A., and Dobson, C. M. (1999) Formation of amyloid fibrils by peptides derived from the bacterial cold shock protein CspB, Protein Sci., 8, 1350-1357, https://doi.org/10.1110/ps.8.6.1350.
  9. Marcoleta, A., Wien, F., Arluison, V., Lagos, R., and Giraldo, R. (2019) Bacterial amyloids, eLS, 1-9, https:// doi.org/10.1002/9780470015902.a0028401.
  10. Kosolapova, A. O., Antonets, K. S., Belousov, M. V., and Nizhnikov, A. A. (2020) Biological functions of prokaryotic amyloids in interspecies interactions: facts and assumptions, Int. J. Mol. Sci., 21, 7240, https://doi.org/10.3390/ijms21197240.
  11. Molina-García, L., Gasset-Rosa, F., Moreno-del Álamo, M., de la Espina, S., and Giraldo, R. (2018) Addressing intracellular amyloidosis in bacteria with RepA-WH1, a prion-like protein, Methods Mol. Biol., 1779, 289-311, https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7816-8_18.
  12. Bhattacharya, M., Jain, N., and Mukhopadhyay, S. (2011) Insights into the mechanism of aggregation and fibril formation from bovine serum albumin, J. Phys. Chem. B, 115, 14, 4195-4205, https://doi.org/10.1021/jp111528c.
  13. McParland, V. J., Kalverda, A. P., Homans, S. W., and Radford, S. E. (2002) Structural properties of an amyloid precursor of beta (2)-microglobulin, Nat. Struct. Biol., 9, 326-331. https://doi.org/10.1038/nsb791.
  14. Gopalswamy, M., Kumar, A., Adler, J., Baumann, M., Henze, M., Kumar, S. T., Fändrich, M., Scheidt, H. A., Huster, D., and Balbach, J. (2015) Structural characterization of amyloid fibrils from the human parathyroid hormone, Biochim. Biophys. Acta, 1854, 249-257, https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2014.12.020.
  15. Bellesia, G., and Shea, J.-E. (2009) Diversity of kinetic pathways in amyloid fibril formation, J. Chem. Phys., 131, 111102, https://doi.org/10.1063/1.3216103.
  16. Friedman, R., and Caflisch, A. (2011) Surfactant effects on amyloid aggregation kinetics, J. Mol. Biol., 414, 303-312, https://doi.org/10.1016/j.jmb.2011.10.011.
  17. Grigolato, F., and Arosio, P. (2021) The role of surfaces on amyloid formation, Biophys. Chem., 270, 106533, https://doi.org/10.1016/j.bpc.2020.106533.
  18. Chiti, F., Webster, P., Taddei, N., and Dobson, C. M. (1999) Designing conditions for in vitro formation of amyloid protofilaments and fibrils, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 96, 3590-3594, https://doi.org/10.1073/pnas.96.7.3590.
  19. Oldfield, C. J., and Dunker, A. K. (2014) Intrinsically disordered proteins and intrinsically disordered protein regions, Annu. Rev. Biochem., 83, 553-584, https://doi.org/10.1146/annurev-biochem-072711-164947.
  20. Cornish, J., Chamberlain, S. G., Owen, D., and Mott, H. R. (2020) Intrinsically disordered proteins and membranes: a marriage of convenience for cell signalling? Biochem. Soc. Trans., 48, 2669-2689, https://doi.org/10.1042/BST20200467.
  21. Uversky, V. N. (2019) Protein intrinsic disorder and structure-function continuum, Prog. Mol. Biol. Transl. Sci., 166, 1-17, https://doi.org/10.1016/bs.pmbts.2019.05.003.
  22. Delcour, A. H. (2003) Solute uptake through general porins, Front. Biosci. Landmark, 8, 1055-1071, https:// doi.org/10.2741/1132.
  23. Haltia T., and Freire, E. (1995) Forces and factors that contribute to the structural stability of membrane proteins, Biochim. Biophys. Acta, 1241, 295-322, https://doi.org/10.1016/0304-4157(94)00161-6.
  24. Pogozheva, I. D., Tristram-Nagle, S., Mosberg, H., and Lomize, A. L. (2013) Structural adaptations of proteins to different biological membranes, Biochim. Biophys. Acta, 1828, 2592-2608, https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2013.06.023.
  25. Ziervogel, B. K., and Roux, B. (2013) The binding of antibiotics in OmpFporin, Structure, 21, 76-87, https:// doi.org/10.1016/j.str.2012.10.014.
  26. Bajaj, H., Acosta-Gutierrez, S., Bodrenko, I., Malloci, G., Scorciapino, M. A., Winterhalte, M., and Ceccarelli, M. (2017) Bacterial outer membrane porins as electrostatic nanosieves: Exploring transport rules of small polar molecules, ACS Nano, 11, 5465-5473, https://doi.org/10.1021/acsnano.6b08613.
  27. Chistyulin, D. K., Zelepuga, E. A., Novikov, V. L., Balaneva, N. N., Glazunov, V. P., Chingizova, E. A., Khomenko, V. A., and Novikova, O. D. (2023) Molecular model of norfloxacin translocation through Yersinia pseudotuberculosis porin OmpF channel: electrophysiological and molecular modeling study, Biochemistry (Moscow) Suppl. Ser. A Membr. Cell Biol., 17, S20-S38, https://doi.org/10.1134/S1990747823070024.
  28. Danoff, E. J., and Fleming, K. G. (2015) Aqueous, unfolded OmpA forms amyloid-like fibrils upon self-association, PLoS One, 10, e0132301, https://doi.org/10.1371/journal.pone.0132301.
  29. Khomenko, V. A., Portnyagina, O. Y., Novikova, O. D., Isaeva, M. P., Kim, N. Y., Likhatskaia, G. N., Vostrikova, O. P., and Solov’eva, T. F. (2008) Isolation and characterization of recombinant OmpF-like porin from the Yersinia pseudotuberculosis outer membrane, Russ. J. Bioorg. Chem., 34, 162-168, https://doi.org/10.1134/s1068162008020040.
  30. Novikova, O. D., Kim, N. Y., Luk’yanov, P. A., Likhatskaya, G. N., Emel’yanenko, V. I., and Solov’eva, T. F. (2007) Effects of pH on structural and functional properties of porin from the outer membrane of Yersinia pseudotuberculosis. II. Characterization of pH-induced conformational intermediates of yersinin, Biochemistry (Moscow) Suppl. Ser. A Membr. Cell Biol., 1, 154-162, https://doi.org/10.1134/S1990747807020080.
  31. Novikova, O. D., Chistyulin, D. K., Khomenko, V. A., Sidorin, E. V., Kim, N. Y., Sanina, N. M., Portnyagina, O. Y., Solov’eva, T. F., Uversky, V. N., and Shnyrov, V. L. (2017) Peculiarities of thermal denaturation of OmpF porin from Yersinia ruckeri, Mol. Bio. Syst., 13, 1854-1862, https://doi.org/10.1039/c7mb00239d.
  32. Oates, M. E., Romero, P., Ishida, T., Ghalwash, M., Mizianty, M. J., Xue, B., Dosztányi, S., Uversky, V. N., Obradovic, Z., Kurgan, L., Dunker, A. K., and Gough, J. (2012) D2P2: database of disordered protein predictions, Nucleic Acids Res., 41, D508-D516, https://doi.org/10.1093/nar/gks1226.
  33. Dass, R., Mulder, F. A., and Nielsen, J. T. (2020) ODiNPred: comprehensive prediction of protein order and disorder, Sci. Rep., 10, 1-16, https://doi.org/10.1038/s41598-020-71716-1.
  34. Novikova, O. D., Uversky, V. N., and Zelepuga, E. A. (2021) Non-specific porins of Gram-negative bacteria as proteins containing intrinsically disordered regions with amyloidogenic potential, Progr. Molec. Biol.Transl. Sci., 183, 75-99, https://doi.org/10.1016/bs.pmbts.2021.06.012.
  35. Новикова О. Д., Федореева Л. И., Хоменко В. А., Портнягина О. Ю., Ермак И. М., Лихацкая Г. Н., Мороз С. В., Соловьева Т. Ф., Оводов Ю. С. (1993) Влияние способа экстракции порообразующего белка из Yersinia pseudotuberculosis на его макромолекулярную организацию, Биоорган. химия, 19, 536-547.
  36. Laemmli, U. K. (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4, Nature, 227, 680-685, https://doi.org/10.1038/227680a0.
  37. Гааль О., Медьеши Г. А., Верецкеи Л. (1982) Электрофорез при разделении биологических макромолекул, Мир, Москва.
  38. Остерман Л. А. (1985) Хроматография белков и нуклеиновых кислот, Наука, Москва.
  39. Ким Н. Ю., Новикова О. Д., Хоменко В. А., Лихацкая Г. Н., Вострикова О. П., Емельяненко В. И., Кузнецова С. М., Соловьева Т. Ф. (2007). Влияние pH на структуру и функциональную активность порина из наружной мембраны Yersinia pseudotuberculosis. 1. Функционально значимые конформационные переходы иерсинина, Биол. мембраны, 24, 150-158.
  40. Sreerama, N., and Woody, R. W. (2000) Estimation of protein secondary structure from circular dichroism spectra: comparison of CONTIN, SELCON, and CDSSTR methods with an expanded reference set, Anal. Biochem, 287, 252-260, https://doi.org/81910.1006/abio.2000.4880.
  41. Molecular Operating Environment (MOE), 2019.01; ChemicalComputingGroupULC, 1010 Sherbrooke St. West, Suite #910, Montreal, QC, Canada, H3A 2R7, 2019, URL: https://www.chemcomp.com/Products.htm
  42. Likhatskaya, G. N., Solov’eva, T. F., Novikova, O. D., Issaeva, M. P., Gusev, K. V., Kryzhko, I. B., Trifonov, E. V., and Nurminski, E. A. (2005) Homology models of the Yersinia pseudotuberculosis and Yersinia pestis general porins and comparative analysis of their functional and antigenic regions, J. Biomol. Struct. Dyn., 23, 163-174, https://doi.org/10.1080/07391102.2005.1050705.
  43. Case, D. A., Babin, V., Berryman, J. T., Betz, R. M., Cai, Q., Cerutti, D. S., Cheatham, T. E., Darden, T. A., and Duke, R. E. (2014) AMBER 14, University of California, SanFrancisco.
  44. Jorgensen, W. L., Chandrasekhar, J., Madura, J. D., Impey, R. W., and Klein, M. L. (1983) Comparison of simple potential functions for simulating liquid water, J. Chem. Phys., 79, 926-935, https://doi.org/10.1063/1.445869.
  45. Obradovic, Z., Peng, K., Vucetic, S, Radivojac, P., and Dunker, A. K. (2005) Exploiting heterogeneouss sequence properties improves prediction of protein disorder, Proteins, 61, 176-182, https://doi.org/10.1002/prot.20735.
  46. Peng, K, Radivojac, P, Vucetic, S, Dunker, A. K., and Obradovic, Z. (2006) Length-dependent prediction of protein intrinsic disorder, BMC Bioinformatics, 7, 208, https://doi.org/10.1186/1471-2105-7-208.
  47. Peng, K., Vucetic, S., Radivojac, P., Brown, C. J., Dunker, A. K., and Obradovic, Z. (2005) Optimizing long intrinsic disorder predictors with protein volutionary information, J. Bioinform. Comput. Biol., 3, 35-60, https:// doi.org/10.1142/s0219720005000886.
  48. Romero, P., Obradovic, Z., Li, X., Garner, E. C., Brown, C. J., and Dunker, A. K. (2001) Sequence complexity of disordered protein, Proteins, 42, 38-48, https://doi.org/10.1002/1097-0134(20010101) 42:1<38:aid-prot50>3.0.co;2-3.
  49. Xue, B., Dunbrack, R. L., Williams, R. W., Dunker, A. K., and Uversky, V. N. (2010) PONDR-FIT: a meta-predictor of intrinsically disordered amino acids, Biochim. Biophys. Acta, 1804, 996-1010, https://doi.org/10.1016/ j.bbapap.2010.01.011.
  50. Mészáros, B., Erdős, G., and Dosztányi, Z. (2018) IUPred2A: context-dependent prediction of protein disorder as a function of redox state and protein binding, Nucleic Acids Res., 46 (W1), W329-W337, https://doi.org/10.1093/nar/gky384.
  51. Dayhoff, G. W., and Uversky, V. N. (2022) Rapid prediction and analysis of protein intrinsic disorder, Protein Sci., 31, e4496, https://doi.org/10.1002/pro.4496.
  52. Sidorova, O. V., Khomenko, V. A., Portnyagina, O. Y., Likhatskaya, G. N., Vakorina, T. I., Kim, N. Y., Chistyulin, D. K., Solov’eva, T. F., and Novikova, O. D. (2014) Mutant OmpF porins of Yersinia pseudotuberculosis with deletions of external loops: structure–functional and immunochemical properties, Biochem. Biophys. Res. Commun., 445, 428-432, https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2014.02.018.
  53. Chehin, R., Iloro, I., Marcos, M. J., Villar, E., Shnyrov, V. L., and Arrondo, J. L. R. (1999) Thermal and pH-induced on formational changes of aβ-sheet protein monitored by infrared spectroscopy, Biochemistry, 38, 1525-1530, https://doi.org/10.1021/bi981567j.
  54. Kazlauskaite, J., Young, A., Gardner, C. E., Macpherson, J. V., Venien-Bryan, C., and Pinheiro, T. J. (2005) An unusual soluble beta-turn-rich conformation of prion is involved in fibril formation and toxic to neuronal cells, Biochem. Biophys. Res. Commun., 328, 292-305, https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2004.12.172.
  55. Colon, W., and Kelly, J. W. (1992) Partial denaturation of transthyretin is sufficient for amyloid fibril formation in vitro, Biochemistry, 31, 8654-8660, https://doi.org/10.1021/bi952501g.
  56. Chiti, F., and Dobson, C. M. (2009). Amyloid formation by globular proteins under native conditions, Nat. Chem. Biol., 5, 15-22, https://doi.org/10.1038/nchembio.131.
  57. Sikkink, L. A., and Ramirez-Alvarado, M. (2008) Salts enhance both protein stability and amyloid formation of an immunoglobulin light chain, Biophys.Chem.,135, 25-31, https://doi.org/10.1016/j.bpc.2008.02.019.43.
  58. Сулацкая А. И., Кузнецова И. М. (2010) Взаимодействие тиофлавина Т с амилоидными фибриллами как инструмент для изучения их структуры, Цитология, 52, 955-959.
  59. Neudecker, P., Robustelli, P., Cavalli, A., Walsh, P., Lundström, P., Zarrine-Afsar, A., and Kay, L. E. (2012) Structure of an intermediate state in protein folding and aggregation, Science, 336, 362-366, https://doi.org/10.1126/science.1214203.
  60. Катина Н. С., Ильина Н. Б., Кашпаров И. А., Балобанов В. А., Васильев В. Д., Бычкова В. Е. (2011) Мутантные формы апомиоглобина с одиночными заменами в положении Val10 способны образовывать амилоидные структуры при пермиссивной температуре, Биохимия, 76, 680-691.
  61. Мельникова Н. М., Сулацкий М. И., Кузнецова И. М., Туроверов К. К., Сулацкая А. И. (2022) Структурный полиморфизм амилоидных фибрилл на основе лизоцима, Цитология, 64, 86-95.https://doi.org/10.31857/S0041377122010060.
  62. Bucciantini, M., Giannoni, E., Chiti, F., Baroni, F., Formigli, L., Zurdo, J., Taddei, N., Ramponi, G., Dobson, C. M., and Stefani, M. (2002) Inherent toxicity of aggregates implies a common mechanism for protein misfolding diseases, Nature, 416, 507-511, https://doi.org/10.1038/416507a.
  63. Verma, M., Vats, A., and Taneja, V. (2015) Toxic species in amyloid disorders: oligomers or mature fibrils, Ann. Indian Acad. Neurol., 18, 138-145, https://doi.org/10.4103/0972-2327.144284.
  64. Sirangelo, I., Malmo, C., Iannuzzi, C., Mezzogiorno, A., Bianco, M. R., Papa, M., and Irace, G. (2004) Fibrillogenesis and cytotoxic activity of the amyloid-forming apomyoglobin mutant W7FW14F*, J. Biol. Chem., 279, 13183-13189, https://doi.org/10.1074/jbc.M308207200.
  65. Sahaya, R. J. J., Chinnappan, S. T, Singaravel, R., and Ignacimuthu, S. (2016) Outer membrane protein C (OmpC) of Escherichia coli induces neurodegeneration in mice by acting as an amyloid, Biotechnol. Lett., 38, 689-700, https://doi.org/10.1007/s10529-015-2025-8.
  66. An, T.T., Feng, S., and Zeng, C. M. (2017) Oxidized epigallocatechin gallate inhibited lysozyme fibrilation more strongly than the native form, Redox Biol., 11, 315-321, https://doi.org/10.1016/j.redox.2016.12.016.
  67. Schnaitman, C. A. (1973) Outer membrane proteins of Escherichia coli: II. Heterogeneity of major outer membrane polypeptides, Arch. Biochem. Biophys., 157, 553-560, https://doi.org/10.1016/0003-9861(73)90674-7.
  68. Гузев К. В., Исаева М. П., Новикова О. Д., Соловьева Т. Ф., Рассказов В. А. (2005) Молекулярная характеристика OmpF-подобных поринов патогенных Yersinia, Биохимия, 70, 1338-1345.
  69. Лакович Дж. (1986) Основы флуоресцентной спектроскопии, Мир, Москва.
  70. Burstein, E. A., Vedenkina, N. S., and Ivkova, M. N. (1973) Fluorescence and the location of tryptophan residues in protein molecules, Photochem. Photobiol., 18, 263-279, https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.1973.tb06422.x.
  71. Hunter, R. J. (1981) Zeta Potential in Colloid Science: Principles and Applications, Academic Press, N.Y.
  72. Uversky, V. N. (2009) Intrinsically disordered proteins and their environment: effects of strong denaturants, temperature, pH, counter ions, membranes, binding partners, osmolytes, and macromolecular crowding, Protein J., 28, 305-325, https://doi.org/10.1007/s10930-009-9201-4.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Спектры флуоресценции комплекса тиофлавина Т с поринами. а – YpOmpFt после инкубации в фосфатно-цитратном буферном растворе (pH 4,5) в течение 2-х и 4-х недель при 42 °C. б – YpOmpFt после прогрева при 95 °C в течение 5 ч в Tris-HCl-буфере (pH 7,4) и последующей экспозиции при 25 °C в течение 10 суток. в – Рекомбинантные порины, полноструктурный (RP) и мутантный c делецией наружной петли 6 (RР_del6), образцы хранились в фосфатно-солевом буферном растворе (pH 7,4) в присутствии 0,01%-ного Zw 3-14 при 4 °C в течение 6 месяцев. г – YpOmpFt после инкубации в фосфатно-цитратном буферном растворе (pH 4,5) в течение 2-х недель при 42 °C, затем прогрева при 95 °C в течение 5 ч и последующей экспозиции образца при 25 °C в течение 10 суток. Флуоресценцию возбуждали при 412 нм. Данные представлены как среднее ± стандартное отклонение из трех экспериментальных повторов

Скачать (187KB)
3. Рис. 2. Флуоресцентная микроскопия окрашенных тиофлавином Т агрегатов. а – YpOmpFt после инкубации в фосфатно-цитратном буферном растворе (pH 4,5) в течение 4-х недель при 42 °C. б – YpOmpFt после прогрева при 95 °C в течение 5 ч в Tris-HCl-буфере (pH 7,4) с последующей выдержкой образца при 25 °C в течение 10 суток. в – Рекомбинантный мутантный порин c делецией наружной петли 6 (RР_del6), образец хранился в фосфатно-солевом буферном растворе (pH 7,4) в присутствии 0,01%-ного Zw 3-14 при 4 °C в течение 6 месяцев. г – YpOmpFt после инкубации в фосфатно-цитратном буферном растворе (pH 4,5) в течение 2-х недель при 42 °C и прогрева при 95 °C в течение 5 ч. д – YpOmpFt после инкубации в условиях, указанных для панели (г) и последующей выдержки при 25 °C в течение 10 суток. Изображения получены с помощью микроскопа AXIO Imager. A1 (Zeiss); объектив – ECPlan-NEOFLUAR 40 × 0,75. Масштаб: 50 мкм

Скачать (62KB)
4. Рис. 3. Цитотоксичность YpOmpFt по отношению к культуре клеток млекопитающих (нейробластома мыши Neuro-2aCCL-131™ («АТСС», США)). Цитотоксическую активность выражали как эффективную концентрацию (ЭК50), при которой метаболическая активность клеток ингибируется на 50%. Долю мертвых клеток нормализовали в каждом случае относительно отрицательного контроля (фосфатно-солевой буфер). Данные представлены как среднее ± стандартное отклонение из трех экспериментальных повторов; достоверность различий между опытными и контрольной группами оценивали с помощью t-критерия Стъюдента (* р ≤ 0,05)

Скачать (54KB)
5. Рис. 4. Физико-химическая характеристика различных молекулярных форм порина из Y. pseudotuberculosis. а – Электрофореграмма различных молекулярных форм порина из Y. pseudotuberculosis: 1 – YpOmpFm_10 кДа, денатурированный тример порина, после обработки при pH 4,5 в течение 5 ч при 95 °C с последующей выдержкой при 25 °C в течение 10 суток; 2 – YpOmpFm; 3 – YpOmpFt; 4 – белки-маркеры. б – Пептидные карты продуктов триптического гидролиза денатурированного теплом мономера, YpOmpFm и полипептида YpOmpFm_10 кДа. в – Определение характеристической вязкости различных молекулярных форм порина OmpF из Y. pseudotuberculosis. г – ВП-МАЛДИ-спектры YpOmpFt и полипептида YpOmpFm_10 кДа

Скачать (169KB)
6. Рис. 5. Характеристика пространственной структуры различных молекулярных форм порина OmpF Y. pseudotuberculosis. а – Спектры КД в ароматической области. Спектры собственной белковой флуоресценции образцов порина YpOmpFt и YpOmpFm_10 кДа при возбуждении 280 нм (б) и 296 нм (в)

Скачать (114KB)
7. Рис. 6. Модель пространственной структуры и анализ предрасположенности порина OmpF Y. pseudotuberculosis (IB серовара O-серотипа, штамм IP 31758; UniProtIDA0A0U1QUP9) к внутренней разупорядоченности. а – Результаты анализа аминокислотной последовательности порина YpOmpF, полученные с помощью биоинформатических инструментов. Высокие значения вероятности внутренней разупорядоченности (>0,5) на графике соответствуют участкам аминокислотной последовательности с внутренне неупорядоченной структурой, тогда как значения вероятности внутренней разупорядоченности от 0,15 до 0,5 присущи участкам аминокислотной последовательности с повышенной структурной гибкостью. Кривые различных цветов соответствуют расчетам, сделанным различными предсказательными программами: PONDR® VLS2 [45, 46], PONDR® VL3 [47], PONDR® VLXT [48], PONDR® FIT [49], IUPred-Long и IUPred-Short [50]. Веб-приложение Rapid Insorder Analysis Online (RIDAO) использовали для суммирования результатов, полученных с помощью каждой предсказательной программы [51]. б – Теоретическая модель порина YpOmpF представлена в виде ленточной диаграммы и окрашена в соответствии с предрасположенностью данных участков структуры к внутренней неупорядоченности: коричневым цветом отмечены упорядоченные участки, структурно-пластичные – голубым. Остатки Trp приведены в шаро-стержневом представлении, а остатки Tyr – в стержневом представлении. Последовательности поринов OmpF из штаммов Y. pseudotuberculosis 1b IP 31758, UniProtIDA0A0U1QUP9 и 1b 598 идентичны

Скачать (221KB)

© Российская академия наук, 2024