Сравнение криорезистентности тестикулярных и уринальных сперматозоидов жабы Bufo bufo (Amphibia, Anura, Bufonidae) в процессе медленного замораживавания

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Проведено сравнительное исследование морфофункциональных показателей тестикулярных (неактивированных) и уринальных (активированных) сперматозоидов обыкновенной жабы Bufo bufo (L., 1758) до и после криоконсервации. Криоконсервацию осуществляли медленным способом. В качестве криопротекторов использовали 10%-ную сахарозу и 12%-ный диметилформамид. Показано, что пул тестикулярных сперматозоидов содержит значительно больше клеток с аномальной морфологией и до, и после криоконсервации. Осмотичность базовой среды для криозащитного раствора (раствор Рингера для амфибий – 230 мОсм или уринальная плазма – 45 мОсм) оказывала незначительное влияние на выживаемость тестикулярных и уринальных сперматозоидов в процессе криоконсервации. Сравнение морфофункциональных характеристик сперматозоидов до и после замораживания–оттаивания свидетельствует, что криорезистентность тестикулярных и активированных уринальных сперматозоидов различается слабо.

Об авторах

Н. В. Шишова

Институт биофизики клетки Российской академии наук Пущинского научного центра
биологических исследований Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: cryopreservation@list.ru
Россия, Московская обл., Пущино

С. А. Каурова

Институт биофизики клетки Российской академии наук Пущинского научного центра
биологических исследований Российской академии наук

Email: cryopreservation@list.ru
Россия, Московская обл., Пущино

В. К. Утешев

Институт биофизики клетки Российской академии наук Пущинского научного центра
биологических исследований Российской академии наук

Email: cryopreservation@list.ru
Россия, Московская обл., Пущино

Э. Н. Гахова

Институт биофизики клетки Российской академии наук Пущинского научного центра
биологических исследований Российской академии наук

Email: cryopreservation@list.ru
Россия, Московская обл., Пущино

Список литературы

  1. Юшкова Е.А., Боднарь И.С., Шадрин Д.М. и др. 2018. Цитогенетические и молекулярно-генетические показатели в популяциях бесхвостых амфибий (Rana arvalis Nilsson) в условиях радиоактивного и химического загрязнения водной среды // Биология внутр. вод. № 3. С. 83. https://doi.org/10.1134/S0320965218030233
  2. Beebee T.J.C., Griffiths R.A. 2005. The amphibian decline crisis: a watershed for conservation biology? // Biol. Conserv. V. 125. P. 271. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2005.04.009
  3. Browne R.K., Clulow J., Mahony M., Clark A. 1998. Successful recovery of motility and fertility of cryopreserved cane toad (Bufo marinus) sperm // Cryobiology. V. 37. P. 339. https://doi.org/10.1006/cryo.1998.2129
  4. Burger I.J, Lampert S.S., Kouba C.K. et al. 2022. Development of an amphibian sperm biobanking protocol for genetic management and population sustainability // Cons. Physiol. V. 10. Iss. 1. coac032. https://doi.org/10.1093/conphys/coac032
  5. Clulow J., Clulow S. 2016. Cryopreservation and other assisted reproductive technologies for the conservation of threatened amphibians and reptiles: bringing the ARTs up to speed // Reprod. Fertil. Devel. V. 28. № 8. P. 1116. https://doi.org/10.1071/RD15466
  6. Gardner T.A., Barlow J., Chazdon R. et al. 2009. Prospects for tropical forest biodiversity in a human-modified world // Ecol. Lett. V. 12. P. 561. https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2009.01294.x
  7. Guy E.L., Gillis A.B., Kouba A.J. et al. 2020. Sperm collection and cryopreservation for threatened newt species // Cryobiology. V. 94. P. 80. https://doi.org/10.1016/j
  8. Hopkins B.K., Herr C. 2008. Cryopreservation of frog (Ranapipiens) sperm cells collected by non-lethal methods // Reprod. Fertil. Devel. V. 20. № 1. P. 120. https://doi.org/10.1071/RDv20n1Ab78
  9. Kouba A.J., Vance C.K. 2009. Applied reproductive technologies and genetic resource banking for amphibian conservation // Reprod. Fertil. Devel. V. 21. № 6. P. 719. https://doi.org/10.1071/RD09038
  10. Kouba A.J., Vance C.K., Frommeyer M.A., Roth T.L. 2003. Structural and functional aspects of Bufo americanus spermatozoa: Effects of inactivation and reactivation // J. Exp. Zool. V. 295. № 2. P. 172. https://doi.org/10.1002/jez.a.10192
  11. Langhorne C.J., Calatayud N.E., Kouba A.J. et al. 2013. Cryoconservation: successful sperm cryopreservation and develop-mental outcomes using endangered North American amphibians // Cryobiology. V. 67. № 3. P. 405. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2013.09.032
  12. Poo S., Hinkson K.M. 2019. Applying cryopreservation to anuran conservation biology // Conserv. Sci. Pract. V. 1. e91. https://doi.org/10.1111/csp2.91
  13. Shishova N.V., Uteshev V.K., Kaurova S.A. et al. 2011. Cryopreservation of hormonally induced sperm for the conservation of threatened amphibians with Rana temporaria as a model research species // Theriogenol. V. 75. № 2. P. 220. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.08.008
  14. Uteshev V.K., Gakhova E.N., Kramarova L.I. et al. 2019. Cryobanking of amphibian genetic recourses in Russia: past and future // Russ. J. Herpetol. V. 26. № 6. P. 319. https://doi.org/10.30906/1026-2296-2019-26-6-319-324

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2.

Скачать (3MB)
Метаданные

© Н.В. Шишова, С.А. Каурова, В.К. Утешев, Э.Н. Гахова, 2023