Влияние F-заместителей в тиофенолиле на строение и свойства µ2-S-(дифтортиолат)тетранитрозильных биядерных комплексов железа
- Авторы: Санина Н.А.1,2,3, Конюхова А.С.1,2, Корчагин Д.В.1, Ованесян Н.С.1, Куликов А.В.1, Мумятова В.А.1, Терентьев А.А.1,2,3, Алдошин С.М.1
- 
							Учреждения: 
							- Федеральный исследовательский центр проблем химической физики и медицинской химии РАН
- Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
- Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования “Государственный университет просвещения”
 
- Выпуск: Том 68, № 9 (2023)
- Страницы: 1165-1180
- Раздел: КООРДИНАЦИОННЫЕ СОЕДИНЕНИЯ
- URL: https://rjeid.com/0044-457X/article/view/666214
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0044457X23600664
- EDN: https://elibrary.ru/WRLQZC
- ID: 666214
Цитировать
Полный текст
 Открытый доступ
		                                Открытый доступ Доступ предоставлен
						Доступ предоставлен Доступ платный или только для подписчиков
		                                							Доступ платный или только для подписчиков
		                                					Аннотация
Синтезированы новые нейтральные биядерные тетранитрозильные комплексы железа состава [Fe2R2(NO)4] (R = 2,4-дифтортиофенил (1) и 3,4-дифтортиофенил (2)) – доноры монооксида азота (NO). Комплексы исследованы методами мессбауэровской, ИК- и ЭПР-спектроскопии, рентгеноструктурного и элементного анализа. Впервые изучена антибактериальная активность и цитотоксичность на нормальных клетках Vero комплексов 1, 2 и ранее синтезированного комплекса [\({\text{F}}{{{\text{e}}}_{{\text{2}}}}{\text{R}}_{2}^{'}\)(NO)4] (R' = 2,4-дихлортиофенил (3)) и выполнен корреляционный анализ количество NO–биологическая активность в зависимости от природы и положения заместителя в тиофенильном лиганде. Установлено, что комплекс 2 обладает антибактериальной активностью, превосходящей активность известного антибиотика канамицина в 4 раза, и антибиопленочной активностью: на 46% ингибирует формирование биопленок и на 32% разрушает сформированные биопленки M. luteus, превосходя действие препаратов сравнения канамицина и ампициллина.
Ключевые слова
Об авторах
Н. А. Санина
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова; Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования “Государственный университет просвещения”
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1; Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1; Россия, 141014, Мытищи, ул. Веры Волошиной, 24						
А. С. Конюхова
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1; Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1						
Д. В. Корчагин
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1						
Н. С. Ованесян
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1						
А. В. Куликов
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1						
В. А. Мумятова
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1						
А. А. Терентьев
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова; Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования “Государственный университет просвещения”
														Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1; Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1; Россия, 141014, Мытищи, ул. Веры Волошиной, 24						
С. М. Алдошин
Федеральный исследовательский центр проблем химической физикии медицинской химии РАН
							Автор, ответственный за переписку.
							Email: sanina@icp.ac.ru
				                					                																			                												                								Россия, 142432, Черноголовка, пр-т Академика Семенова, 1						
Список литературы
- Thomas J.T., Robertson J.H., Cox E.G. // Acta Crystallogr. 1958. V. 11. P. 599. https://doi.org/10.1107/S0365110X58001602
- Butler A.R., Glidewell C., Hyde A.R. et al. // Polyhedron. 1985. V. 4. P. 797. https://doi.org/10.1016/S0277-5387(00)87029-1
- Butler A.R., Glidewell C., Hyde A.R. et al. // Inorg. Chem. 1985. V. 24. P. 2931. https://doi.org/10.1021/ic00213a012
- Glidewell C., Harman M.E., Hursthouse M.B. et al. // J. Chem. Res. 1988. V. 212–213. P. 1676.
- Harrop T.C., Song D., Lippard S.J. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2006. V. 128. P. 3528. https://doi.org/10.1021/ja060186n
- Tsou C.-C., Lu T.-T., Liaw W.-F. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2007. V. 129. P. 12626. https://doi.org/10.1021/ja0751375
- Lee H.M., Chiou S.-J. // Acta Crystallogr., Sect. E: Struct. Rep. Online. 2009. V. 65. № m1600. https://doi.org/10.1107/S1600536809048065
- Chen Y.-J., Ku W.-C., Feng L.-T. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2008. V. 130. P. 10929. https://doi.org/10.1021/ja711494m
- Chiou S.-J., Wang C.-C., Chang Ch.-M. et al. // J. Organomet. Chem. 2008. V. 693. P. 3582. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2008.08.034
- Tsai M.-C., Tsai F.-T., Lu T.-T. et al. // Inorg. Chem. 2009. V. 48. P. 9579. https://doi.org/10.1021/ic901675p
- Lu T.-T., Huang H.-W., Liaw W.-F. et al. // Inorg. Chem. 2009. V. 48. P. 9027. https://doi.org/10.1021/ic9012679
- Wang R., Camacho-Fernandez M.A., Xu W. et al. // Dalton Trans. 2009. V. 5. P. 777. https://doi.org/10.1039/B810230A
- Chang H.-H., Huang H.-J., Ho Y.-L. et al. // Dalton Trans. 2009. V. 32. P. 6396. https://doi.org/10.1039/B902478F
- Rauchfuss T.B., Weatherill T.D. // Inorg. Chem. 1982. V. 21. P. 827. https://doi.org/10.1021/ic00132a071
- Tsai M.-L., Liaw W.-F. // Inorg. Chem. 2006. V. 45. P. 6583. https://doi.org/10.1021/ic0608849
- Tsai M.-L., Hsieh C.-H., Liaw W.-F. et al. // Inorg. Chem. 2007. V. 46. P. 5110. https://doi.org/10.1021/ic0702567
- Harrop T.C., Song D., Lippard S.J. // J. Inorg. Biochem. 2007. V. 101. P. 1730. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2007.05.006
- Chen C.-H., Chiou S.-J., Chen H.-Y. et al. // Inorg. Chem. 2010. V. 49. P. 2023. https://doi.org/10.1021/ic902324d
- Tsou C.-C., Liaw W.-F. // Chem. Eur. J. 2011. V. 17. P. 13358. https://doi.org/10.1002/chem.201100253
- Shih W.-C., Lu T.-T., Yang L.-B. et al. // J. Inorg. Biochem. 2012. V. 113. P. 83. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2012.03.007
- Lu C.-Y., Liaw W.-F. // Inorg. Chem. 2013. V. 52. P. 13918. https://doi.org/10.1021/ic402364p
- Lu T.-T., Wang Y.-M., Hung Ch.-H. et al. // Inorg. Chem. 2018. V. 5720. P. 12425. https://doi.org/10.1021/acs.inorgchem.8b01818
- Hsiao H.-Y., Chung C.-W., Santos J.H. et al. // Dalton Trans. 2019. V. 48. P. 9431. https://doi.org/10.1039/C9DT00777F
- Ostrowski A.D., Ford P.C. // Dalton Trans. 2009. V. 48. P. 10660. https://doi.org/10.1039/B912898K
- Vanin A.F. // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. P. 10356. https://doi.org/10.3390/ijms221910356
- MacMicking J., Xie Q., Nathan C. // Annu. Rev. Immunol. 1997. V. 15. P. 323. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.15.1.323
- Wink D. A., Mitchell J.B. // Free Radic. Biol. Med.1998. V. 25. P. 434. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00092-6
- Murad F. // Biosci Rep. 1999. V. 19. P. 133. https://doi.org/10.1023/A:1020265417394
- Chung H.-T., Pae H.-O., Choi B.-M. et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. V. 282. P. 1075 https://doi.org/10.1006/bbrc.2001.4670
- Davis K.L., Martin E., Turko I.V. et al. // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2001. V. 41. P. 203. https://doi.org/10.1146/annurev.pharmtox.41.1.203
- Webb D.J., Megson I.L. // Expert Opin. Investig. Drugs. 2002. V. 11. P. 587. https://doi.org/10.1038/sj.bjp.0707224
- Bredt D.S. // Mol. Pharmacol. 2003. V. 63. P. 1206. https://doi.org/10.1124/mol.63.6.1206
- McCleverty J.A. // Chem. Rev. 2004. V. 104. P. 403. https://doi.org/10.1021/cr020623q
- Singel D.J., Stamler J.S. // Annu. Rev. Physiol. 2005. V. 67. P. 99. https://doi.org/10.1146/annurev.physiol.67.060603. 090918
- Liu V.W.T., Huang P.L. // Cardiovascular Research. 2008. V. 77. P. 19. https://doi.org/10.1016/j.cardiores.2007.06.024
- Hirst D.G., Robson T. // Curr. Pharm. Des. 2010. V. 16. P. 45. https://doi.org/10.1016/j.redox.2015.07.002
- Toledo J.C., Jr Augusto O. // Chem. Res. Toxicol. 2012. V. 25. P. 975. https://doi.org/10.1021/tx300042g
- Heinrich T.A., da Silva R.S., Miranda K.M. et al. // Br. J. Pharmacol. 2013. V. 169. P. 1417. https://doi.org/10.1111/bph.12217
- Choudhari S.K., Chaudhary M., Bagde S. et al. // World J. Surg. Oncol. 2013. V. 11. P. 118. https://doi.org/10.1186/1477-7819-11-118
- Bondonno C.P., Croft K.D., Hodgson J.M. // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2015. V. 56. P. 2036. https://doi.org/10.1080/10408398.2013.811212
- Basudhar D., Ridnour L.A., Cheng R. et al. // Coord. Chem. Rev. 2016. V. 306. P. 708.https://doi.org/10.1016/j. ccr.2015.06.001.
- Deppisch C., Herrmann G., Graepler-Mainka U. et al. // Infection. 2016. V. 44. P. 513. PMID: 26861246 https://doi.org/10.1007/s15010-016-0879-x
- Ignarro L.J., Freeman B.A. Nitric Oxide: Biology and Pathobiology. London: Elsevier, 2017. 411 p. https://www.sciencedirect.com/book/9780128042731/ nitric-oxide#book-info
- Kamm A., Przychodzen P., Kuban-Jankowska A. et al. // Nitric Oxide. 2019. V. 93. P. 102. https://doi.org/10.1016/j.niox.2019.09.005
- Lehnert N., Kim E., Dong H.T. et al. // Chem. Rev. 2021. V. 121. P. 14682. https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.1c00253
- Алдошин C.М., Санина Н.А. Фундаментальные науки – медицине: Биофизические медицинские технологии. M: МАКС Пресс, 2015. 72 с. https://search.rsl.ru/ru/record/01007915439
- Sanina N.A., Emel’yanova N.S., Chekhlov A.N. et al. // Russ. Chem. Bull. 2010. V. 59. P. 1126. https://doi.org/10.1007/s11172-010-0215-z
- Kozub G.I., Kondratieva T.A., Shilov G.V. et al. // Russ. Chem. Bull. 2023. V. 72. № 3. P. 651. https://doi.org/10.1007/s11172-023-3829-2
- Sanina N.A., Kozub G.I., Zhukova O.S. et al. // J. Coord. Chem. 2013. V. 66. № 20. P. 3602. https://doi.org/10.1080/00958972.2013.848980
- Sanina N.A., Kozub G.I., Kondrat’eva T.A. et al. // J. Coord. Chem. 2021. V. 74. № 4–6. P. 743. https://doi.org/10.1080/00958972.2020.1869222
- Sanina N.A., Kozub G.I., Kondrat’eva T.A. et al. // Russ. Chem. Bull. 2017. V. 66. P. 1706. https://doi.org/10.1007/s11172-017-1944-z
- Kozub G.I., Sanina N.A., Emel’yanova N.S. et al. // Inorg. Chim. Acta. 2018. V. 480. P. 132. https://doi.org/10.1016/j.ica.2018.05.015
- Sanina N.A., Krivenko A.G., Manzhos R.A. et al. // New J. Chem. V. 38. P. 292. https://doi.org/10.1039/C3NJ00704A
- Neshev N.I., Sokolova E.M., Kozub G.I. et al. // Russ. Chem. Bull. 2020. V. 69. P. 1987. https://doi.org/10.1007/s11172-020-2989-y
- Stupina T., Balakina A., Kondrat’eva T. et al. // Sci. Pharm. 2018. V. 86. № 4. P. 46. https://doi.org/10.3390/scipharm86040046
- Mumyatova V.A., Kozub G.I., Kondrat’eva T.A. et al. // Russ. Chem. Bull. 2019. V. 68. № 5. P. 1025. https://doi.org/10.1007/s11172-019-2514-3
- Pokidova O.V., Novikova V.O., Emel’yanova N.S. et al. // Dalton Trans. 2023. V. 52. P. 2641. https://doi.org/10.1039/D2DT04047F
- Sanina N.A., Aldoshin S.M., Rudneva T.N. et al. // Russ. J. Coord. Chem. 2005. V. 31. № 5. P. 301. https://doi.org/10.1007/s11173-005-0093-3
- Weissberger A., Proskauer E., Riddick J.A. et al. // Organic Solvents: Phys. Properties and Methods of Purification. N.Y.: Interscience, 1955. 552 p. https://searchworks.stanford.edu/view/1072486
- Sheldrick G.M. SHELXTL v. 6.14, Structure Determination Software Suite, 2000.
- Cambridge Structural Database. version 5.43 (November, 2022).
- Ignarro L.J., Fukuto J.M., Griscavage J.M. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1993. V. 90. P. 8103. https://doi.org/10.1073/pnas.90.17.8103
- Ford P.C., Miranda K.M. // Nitric Oxide. 2020. V. 103 P. 31. https://doi.org/10.1016/j.niox.2020.07.004
- Awad H.H., Stanbury D.M. // Int. J. Chem. Kinet. 1993. V. 25. P. 375. https://doi.org/10.1002/kin.550250506
- Möller M.N., Rios N., Trujillo M. et al. // J. Biol. Chem. 2019. V. 294. № 40. P. 14776. https://doi.org/10.1074/jbc.REV119.006136
- Sanina N.A., Sulimenkov V., Emel’yanova N.S. et al. // Dalton Trans. 2022. V. 51. P. 8893. https://doi.org/10.1039/D2DT01011A
- Rhodes K.A., Schweizer H.P. // Drug Resist Updates. 2016. V. 28. № 9. P. 82. https://doi.org/10.1016/j.drup.2016.07.003
- Chan C., Hardin T.C., Smart J.I. // Future Microbiol. 2015. V. 10. P. 1325. https://doi.org/10.2217/fmb.15.53
- Srinivasan R., Santhakumari S., Poonguzhali P. et al. // Front Microbiol. 2021. V. 12. P. 676458. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.676458
- Hall C.W., Mah T-F. // FEMS Microbiol Rev. 2017. V. 41. № 3. P. 276. https://doi.org/10.1093/femsre/fux010
Дополнительные файлы
 
				
			 
						 
						 
						 
					 
						 
									

 
  
  
  Отправить статью по E-mail
			Отправить статью по E-mail 






















