Особенности возникновения, развития и генетические механизмы проявления резистентности к фунгицидам из химических классов триазолов и стробилуринов у Zymoseptoria tritici (обзор)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Производство зерна – важный стратегический ресурс Российской Федерации, базовая отрасль сельскохозяйственного производства. Для получения высоких и стабильных урожаев необходимо проведение защитных мероприятий посевов от болезней. В последние годы именно листостебельные болезни зерновых культур являются одними из самых вредоносных в агроценозах. Они существенно снижают урожайность культур, быстро прогрессируют во многих регионах Российской Федерации, а также в других зернопроизводящих странах. Zymoseptoria tritici – опасный грибной фитопатоген, вызывающий септориоз листьев пшеницы, тритикале, ячменя, ржи. За последние десятилетия в генетическом контроле устойчивости пшеницы к Z. tritici был достигнут существенный прогресс. Однако при благоприятных погодных условиях, способствующих развитию грибных инфекций, чтобы не допустить потери урожая и снижения качества сельскохозяйственной продукции, проводят от одной до нескольких обработок фунгицидами. Отечественными и зарубежными учеными отмечается тенденция увеличения резистентности Z. tritici к некоторым фунгицидам, что представляет собой проблему в реализации эффективных мероприятий по защите растений. Такие классы, как триазолы и стробилурины, не являются исключением, и согласно рейтингу FRAC, риск развития резистентности к ним оценивается как средний у первых и высокий у вторых соответственно. Растущие проблемы с устойчивостью популяций Z. tritici к фунгицидам представляют собой угрозу для производства пшеницы в будущем. Цель настоящей работы – проведение анализа современных литературных данных по вопросам возникновения резистентности к фунгицидам из химических классов триазолов и стробилуринов у Z. tritici. В данном обзоре рассмотрены генетические механизмы возникновения резистентности у фитопатогена; приводятся примеры мониторинговых исследований резистентности гриба в разных странах, а также практические рекомендации по реализации антирезистентных стратегий. Успех создания таких стратегий невозможен без знания структуры популяций возбудителей, устойчивости сортов, региональных агроэкологических особенностей развития патогена и возделывания культуры, биологической хозяйственной и экономической эффективности средств и методов защиты.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Н. Г. Зубко

Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений

Автор, ответственный за переписку.
Email: sacura0@yandex.ru
Россия, Санкт-Петербург

Ю. В. Зеленева

Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений

Email: zelenewa@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

Э. А. Конькова

Федеральный аграрный научный центр Юго-Востока

Email: baukenowaea@mail.ru
Россия, Саратов

Л. М. Мохова

Национальный центр зерна им. П. П. Лукьяненко

Email: mohovalubov@mail.ru
Россия, Краснодар

Н. Н. Дубровская

Среднерусский филиал Федерального научного центра им. И. В. Мичурина

Email: natalya.dubrovsckaya@yandex.ru
Россия, Тамбов

Список литературы

  1. AHDB. Septoria tritici in winter wheat. https://ahdb.org.uk/knowledge-library/septoria-tritici-in-winter-wheat. Accessed 08.09.2023.
  2. Albertini C., Gredt M., Leroux P. Mutations of the beta-tubulin gene associated with different phenotypes of benzimidazole resistance in the cereal eyespot fungi Tapesia yallundae and Tapesia acuformis. Pesticide Biochem. Physiol. 1999. V. 64(1). P. 17–31. https://doi.org/10.1006/pest.1999.2406
  3. Bartlett D.W., Clough J.M., Godwin J.R. et al. The strobilurin fungicides. Pest Manag. Sci. 2002. V. 58(7). P. 649–662. https://doi.org/10.1002/ps.520
  4. Ben M’Barek S., Laribi M., Kouki H. et al. Phenotyping Mediterranean durum wheat landraces for resistance to Zymoseptoria tritici in Tunisia. Genes. 2022. V. 13(2). Art. 355. https://doi.org/10.3390/genes13020355
  5. Blake J.J., Gosling P., Fraaije B.A. et al. Changes in field dose-response curves for demethylation inhibitor (DMI) and quinone outside inhibitor (QoI) fungicides against Zymoseptoria tritici, related to laboratory sensitivity phenotyping and genotyping assays. Pest Manag. Sci. 2018. V. 74(2). P. 302–313. https://doi.org/10.1002/ps.4725
  6. Brent K.J., Hollomon D.W. Fungicides resistance in crop pathogens. How can it be managed? FRAC monograph N1. Bristol, 2007.
  7. Brent K.J., Hollomon D.W. Fungicides resistance: the assessment of risk. FRAC monograph N2. Bristol, 1998.
  8. Brown J.K., Chartrain L., Lasserre-Zuber P. et al. Genetics of resistance to Zymoseptoria tritici and applications to wheat breeding. Fungal Genet. Biol. 2015. V. 79. P. 33–41. https://doi.org/10.1016/j.fgb.2015.04.017
  9. Bryson R.J., Stammler G., Hu A. et al. Mefentrifluconazole – the first isopropanol-azole fungicide for the control of Zymospetoria tritici including field isolates with known complex CYP51 haplotypes. In: 12e Conference Int. sur les Mal. des Plantes. Paris, 2018. pp. 222–231.
  10. Cools H.J., Fraaije B.A. Update on mechanisms of azole resistance in Mycosphaerella graminicola and implications for future control. Pest Manag. Sci. 2013. V. 69(2). P. 150–155. https://doi.org/10.1002/ps.3348
  11. Cools H.J., Fraaije B.A., Bean T.P. et al. Transcriptome profiling of the response of Mycosphaerella graminicola isolates to an azole fungicide using cDNA microarrays. Molecular Plant Pathol. 2007. V. 8(5). P. 639–651. https://doi.org/10.1111/j.1364-3703.2007.00411.x
  12. Creissen H.E., Jones P.J., Tranter R.B. et al. Measuring the unmeasurable? A method to quantify adoption of integrated pest management practices in temperate arable farming systems. Pest Manag. Sci. 2019. V. 75(12). P. 3144–3152. https://doi.org/10.1002/ps.5428
  13. Ficke A., Cowger C., Bergstrom G. et al. Understanding yield loss and pathogen biology to improve disease management: Septoria nodorum blotch – a case study in wheat. Plant Disease. 2018. V. 102(4). P. 696–707. https://doi.org/10.1094/pdis-09-17-1375-fe
  14. Fraaije B.A., Burnett F.J., Clark W.S. et al. Resistance development to QoI inhibitors in populations of Mycosphaerella graminicola in the UK. In: H.W. Dehne etc. (eds). Modern fungicides and antifungal compounds IV: Proceedings of the 14th International Reinhardsbrunn Symposium, Friedrichroda, 2–29 April 2004. British Crop Protection Council (BCPC), 2005, pp. 63–71.
  15. Fraaije B.A., Butters J.A., Coelho J.M. et al. Following the dynamics of strobilurin resistance in Blumeria graminis f. sp. tritici using quantitative allele-specific real-time PCR measurements with the fluorescent dye SYBR Green I. Plant Pathol. 2002. V. 51(1). P. 45–54. https://doi.org/10.1046/j.0032-0862.2001.00650.x
  16. Fraaije B.A., Cools H.J., Fountaine J. et al. Role of ascospores in further spread of QoI-resistant cytochrome b alleles (G143A) in field populations of Mycosphaerella graminicola. Phytopathology. 2005. V. 95(8). P. 933–941. https://doi.org/10.1094/phyto-95-0933
  17. Fraaije B.A., Lucas J.A., Clark W.S., Burnett F.J. QoI resistance development in populations of cereal pathogens in the UK. In: Proceedings BCPC International Congress. Crop Science and Technology, Glasgow, 2003, pp. 689–694.
  18. FRAC Code list. 2019. P. 1–17. https://www.frac.info/docs/default-source/publications/frac-code-list/frac-code-list- 2022-final.pdf?sfvrsn=b6024e9a_2. Accessed 08.09.2023.
  19. Fry W.E., Milgroom M.G. Population biology and management of fungicide resistance. American Chemical Society. 1990. P. 275–285. https://doi.org/10.1021/bk-1990-0421.ch019
  20. Fungicide resistance management in cereals. 2023. P. 1–28. https://projectblue.blob.core.windows.net/media/Default/Imported%20Publication%20Docs/AHDB%20Cereals%20&%20Oilseeds/Disease/FRAG/FRAG%20Fungicide%20resistance%20management%20in%20cereals%20guidelines%202023.pdf. Accessed 08.09.2023.
  21. Garnault M., Duplaix C., Leroux P. et al. Spatiotemporal dynamics of fungicide resistance in the wheat pathogen Zymoseptoria tritici in France. Pest Manag. Sci. 2019. V. 75. P. 1794–1807. https://doi.org/10.1002/ps.5360
  22. Gisi U., Pavic L., Stanger C. et al. Dynamics of Mycosphaerella graminicola populations in response to selection by different fungicides. In: H.W. Dehne etc. (eds). Modern fungicides and antifungal compounds IV Alton, 2005, pp. 73–80.
  23. Gisi U., Sierotzki H., Cook A. et al. Mechanisms influencing the evolution of resistance to Qo inhibitor fungicides. Pest Manag. Scie. 2002. V. 58(9). P. 859–867. https://doi.org/10.1002/ps.565
  24. Gooding M.J., Dimmock J., France J. et al. Green leaf area decline of wheat flag leaves: The influence of fungicides and relationships with mean grain weight and grain yield. Annls Appl. Biol. 2000. V. 136(1). P. 77–84. https://doi.org/10.1111/j.1744-7348.2000.tb00011.x
  25. Gorkovenko V.S., Mohova L.M., Smolyanaya N.M. Changes in the species composition of fungi of the genus Septoria in the Kuban. Zashchita i karantin rasteniy. 2005. V. 3. P. 57. (In Russ.).
  26. Grishechkina L.D., Dolzhenko V.I., Kungurceva O.V. Fungicides for the protection of vegetating grain crops. Zashchita i karantin rasteniy. 2022. V. 2. P. 37–56. (In Russ.).
  27. Hailemariam B.N., Kidane Y., Ayalew A. Epidemiological factors of Septoria tritici blotch (Zymoseptoria tritici) in durum wheat (Triticum turgidum) in the highlands of Wollo, Ethiopia. Ecol. Processes. 2020. V. 9. P. 61. https://doi.org/10.1186/s13717-020-00258-1
  28. Hawkins N.J., Fraaije B.A. Fitness penalties in the evolution of fungicide resistance. Ann. Rev. Phytopathology. 2018. V. 56. P. 339–360. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-080417-050012
  29. Heick T.M., Matzen N., Jørgensen L.N. Reduced field efficacy and sensitivity of demethylation inhibitors in the Danish and Swedish Zymoseptoria tritici populations. Europe. Plant Pathol. 2020. V. 157. P. 625–636. https://doi.org/10.1007/s10658-020-02029-2
  30. Huf A., Rehfus A., Lorenz K.H. et al. Proposal for a new nomenclature for CYP51 haplotypes in Zymoseptoria tritici and analysis of their distribution in Europe. Plant Pathol. 2018. V. 67(8). P. 1706–1712. https://doi.org/10.1111/ppa.12891
  31. Jørgensen L.N., Heick T.M., Matzen N. et al. Disease control in cereals. 2020. V. 167. DCA Report. P. 17–57.
  32. Jørgensen L.N., Hovmøller M.S., Hansen J.G. et al. IPM strategies and their dilemmas including an introduction to www.eurowheat.org. J. Integrative Agriculture. 2014. V. 13(2). P. 265–281. https://doi.org/10.1016/S2095-3119(13)60646-2
  33. Jørgensen L.N., Matzen N., Heick T.M. et al. Decreasing azole sensitivity of Z. tritici in Europe contributes to reduced and varying field efficacy. J. Plant Diseas. Protect. 2021. V. 128. P. 287–301. https://doi.org/10.1007/s41348-020-00372-4
  34. Kildea S., Hellin P., Heickc Th.M., Hutton F. Baseline sensitivity of European Zymoseptoria tritici populations to the complex III respiration inhibitor fenpicoxamid. Pest Manag. Science. 2022. V. 78 (11). P. 4419–5041. https://doi.org/10.1002/ps.7067
  35. Kildea S., Marten-Heick T., Grant J. et al. A combination of target-site alterations, overexpression and enhanced efflux activity contribute to reduced azole sensitivity present in the Irish Zymoseptoria tritici population. Eur. J. Plant Pathol. 2019. V. 154. P. 529–540. https://doi.org/10.1007/s10658-019-01676-4
  36. Krupinsky J.M., Tanaka D.L., Lares M.T. et al. Leaf spot diseases of barley and spring wheat as influenced by preceding crops. Agronomy J. 2004. V. 96(1). P. 259–266. https://doi.org/10.2134/agronj2004.2590
  37. Kutcher H.R., Turkington T.K., McLaren D.L. et al. Fungicide and cultivar management of leaf spot diseases of winter wheat in Western Canada. Plant Disease. 2018. V. 102(9). P. 1828–1833. https://doi.org/10.1094/pdis-12-17-1920-re
  38. Leroux P., Walker A.S. Multiple mechanisms account for resistance to sterol 14α-demethylation inhibitors in field isolates of Mycosphaerella graminicola. Pest Manag. Sci. 2011. V. 67(1). P. 44–59. https://doi.org/10.1002/ps.2028
  39. Lucas J.A., Hawkins N.J., Fraaije B.A. The evolution of fungicide resistance. Adv. Applied Microbiol. 2015. V. 90. P. 29–92. https://doi.org/10.1016/bs.aambs.2014.09.001
  40. Lynch J.P., Glynn E., Kildea S. et al. Yield and optimum fungicide dose rates for winter wheat (Triticum aestivum L.) varieties with contrasting ratings for resistance to Septoria tritici blotch. Field Crops Res. 2017. V. 204. P. 89–100. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2017.01.012
  41. Ma Z., Michailides T.J. Advances in understanding molecular mechanisms of fungicide resistance and molecular detection of resistant genotypes inphytopathogenic fungi. Crop Protection. 2005. V. 24(10). P. 853–863. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2005.01.011
  42. Mäe A., Fillinger S., Sooväli P. et al. Fungicide sensitivity shifting of Zymoseptoria tritici in the Finnish-Baltic region and a novel insertion in the MFS1 promoter. 2020. Front. Plant Sci. V. 11. P. 385. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00385
  43. Mavroeidi V.I., Shaw M.W. Sensitivity distributions and crossresistance patterns of Mycosphaerella graminicola to fluquinconazole, prochloraz and azoxystrobin over a period of 9 years. Crop Protection. 2005. V. 24(3). P. 259–266.
  44. McDonald M.C., Renkin M., Spackman M. et al. Rapid parallel evolution of azole fungicide resistance in Australian populations of the wheat pathogen Zymoseptoria tritici. Appl. Environ. Microbiol. 2019. V. 85(4). P. e01908–18. https://doi.org/10.1128/AEM.01908-18
  45. Molecular biological detection of mutations conferring QoI resistance in Zymoseptoria tritici via Pyrosequencing. 2023. https://www.frac.info/docs/default-source/monitoringmethods/approved-methods/septtr-pyro-monitoringmethod-bayer-201604f42b2c512362eb9a1eff00004acf5d.pdf?sfvrsn=aad7499a_2. Accessed 08.09.2023.
  46. Molecular genetic detection of G143A mutation conferring QoI resistance in Zymoseptoria tritici in wheat leaves samples. 2023. https://www.frac.info/docs/default-source/monitoring-methods/approved-methods/septtr-q-pcr-monitoring-method-syngenta-2015.pdf?sfvrsn=a0d7499a_2. Accessed 08.09.2023.
  47. Mullins J.G.L., Parker J.E., Cools H.J. et al. Molecular modelling of the emergence of azole resistance Mycosphaerella graminicola. PLOS One. 2011. V. 6. P. e20973. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0020973
  48. Mutations associated with QoI-resistance, FRAC. 2023. https://www.frac.info/docs/default-source/working-groups/ qoi-quick-references/mutations-associated-with-qoresistance.pdf. Accessed 15.11.2023.
  49. Ouaja M., Bahri B.A., Ferjaoui S. et al. Unlocking the story of resistance to Zymoseptoria tritici in Tunisian old durum wheat germplasm based on population structure analysis. BMC Genomics. 2023. V. 24. P. 328. https://doi.org/10.1186/s12864-023-09395-1
  50. Owen W.J., Yao C., Myung K. et al. Biological characterisation of fenpicoxamid, a new fungicide with utility in cereals and other crops. Pest Manag Sci. 2017. V. 73. P. 2005–2016. https://doi.org/10.1002/ps.4588
  51. Paholkova E.V., Salnikova N.N. Frequency of occurrence of potentially dangerous races in regional populations of Zymoseptoria tritici on wheat crops. Agrarnaya nauka. 2019. V. 1. P. 99–103. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2019-326-1-99-103 (In Russ.)
  52. Parnell S., van der Bosch F., Gilligan C.A. Large-scale fungicide spray heterogeneity and the regional spread of resistant pathogen strains. Phytopathology. 2006. V. 96(5). P. 549–555. https://doi.org/10.1094/phyto-96-0549
  53. Pasko T.I. The effectiveness of fungicides against septoria on winter wheat. Int. J. Humanities Nat. Sci. 2018. V. 3. P. 147–149 (In Russ.)
  54. Pereira D., McDonald B.A., Croll D. The genetic architecture of emerging fungicide resistance in populations of a global wheat pathogen. Genome Biol. Evol. 2020. V. 12(12). P. 2231–2244. https://doi.org/10.1093/gbe/evaa203
  55. Ponomarenko A., Goodwin S.B., Kema G.H.J. Septoria tritici blotch (STB) of wheat. Plant Health Instructor. 2011. https://doi.org/10.1094/PHI-I-2011-0407-01.
  56. Saintenac C., Cambon F., Aouini L. et al. A wheat cysteine-rich receptor-like kinase confers broad-spectrum resistance against Septoria tritici blotch. Nature Communications. 2021. V. 12. P. 433. https://doi.org/10.1038/s41467-020-20685-0
  57. Sanin S.S., Ibragimov T.Z., Strizhekozin Yu.A. The method of calculating wheat yield losses due to diseases. Zashchita i karantin rasteniy. 2018. V. 1. P. 11–15. (In Russ.).
  58. Shherbakova L.A. Development of resistance to fungicides in phytopathogenic fungi and their chemosensabilization as a way to increase the protective effectiveness of triazoles and strobilurines (review). Selskokhozyaystvennaya biologiya. 2019. V. 54(5). P. 875–891. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.5.875rus (In Russ.)
  59. Shkel T.V., Vasilevskaja A.V., Gilep A.A. et al. Molecular analysis of sterol 14-α-demethylase (cyp51) of pathogenic fungi causing nosocomial infections. Trudy Belorusskogo Gosudarstvennogo universiteta. 2013. V. 8(1). P. 152–158. (In Russ.).
  60. Sierotzki H., Frey R., Wullschleger J. et al. Cytochrome b gene sequence and structure of Pyrenophora teres and P. tritici-repentis and implications for QoI resistance. Pest Manag. Science. 2006. V. 63. P. 225–233. https://doi.org/10.1002/ps.1330
  61. Sierotzki H., Parisi S., Steinfeld U. et al. Mode of resistance to respiration inhibitors at the cytochrome bc1 enzyme complex of Mycosphaerella fijiensis field isolates. Pest Manag. Sci. 2000. V. 56(10). P. 833–841. https://doi.org/10.1002/1526-4998(200010)56:10<833:: AID-PS200>3.0.CO;2-Q
  62. Sierotzki H., Wullschleger J., Gisi U. Point mutation in cytochrome b gene conferring resistance to strobilurin fungicides in Erysiphe graminis f. sp. tritici isolates. Pesticide Biochem. Physiol. 2000. V. 68(2). P. 107–112. https://doi.org/10.1006/pest.2000.2506
  63. Suemoto H., Matsuzaki Y., Iwahashi F. Metyltetraprole, a novel putative complex III inhibitor, targets known QoI-resistant strains of Zymoseptoria tritici and Pyrenophora teres. Pest Manag. Sci. 2019. V. 75(4). P. 1181–1189. https://doi.org/10.1002/ps.5288
  64. Tyuterev S.L. Mechanisms of action of fungicides on phytopathogenic fungi. Niva, SPb., 2010. (In Russ.).
  65. Tyuterev S.L. Problems of resistance of pathogens to new fungicides. Plant protection news. 2001. V. 1. P. 38–53. (In Russ.).
  66. Toropova E. Yu., Kazakova O.A., Piskarev V.V. Septoria blotch epidemic process on spring wheat varieties. Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2020. V. 24(2). P. 139–148. https://doi.org/10.18699/VJ20.609
  67. Torriani S.F., Brunner P.C., McDonald B.A. et al. QoI resistance emerged independently at least 4 times in European populations of Mycosphaerella graminicola. Pest Manag Sci. 2009. V. 65(2). P. 155–162. https://doi.org/10.1002/ps.1662
  68. Torriani S.F., Melichar J.P., Mills C. et al. Zymoseptoria tritici: A major threat to wheat production, integrated approaches to control. Fungal Genet. Biol. 2015. V. 79. P. 8–12. https://doi.org/10.1016/j.fgb.2015.04.010
  69. Volkova G.V., Gladkova E.V., Kim J.S. et al. Effectiveness of Vitalon, CS AND KLAD, CS protectants on winter wheat against seed and soil infection. Risovodstvo. 2020. V. 4 (49). P. 49–56. https://doi.org/10.33775/1684-2464-2020-49-4-49-56 (In Russ.)
  70. Wheeler I.E., Kendall S.J., Butters J. et al. Using allele‐specific oligonucleotide probes to characterize benzimidazole resistance in Rhynchosporium secalis. Pesticide Science. 1995. V. 43(3). P. 201–209. https://doi.org/10.1002/ps.2780430305
  71. Yang N., Ovenden B., Baxter B. et al. Multi-stage resistance to Zymoseptoria tritici revealed by GWAS in an Australian bread wheat diversity panel. Front. Plant Sci. 2022. V. 13. Art. 990915. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.990915
  72. Zasorina Je.V., Tysjachnik M.A. The effectiveness of the autumn application of fungicides on winter wheat crops in the conditions of the Central Chernozem region. Vestnik Kurskoy gosudarstvennoy selskohozyaystvennoy akademii. 2020. V. 9. P. 62–67. (In Russ.).
  73. Zeleneva Yu.V., Ablova I.B., Sudnikova V.P. et al. Species composition of wheat Septoria pathogens in the European Part of Russia and identifying SnToxA, SnTox1 and SnTox3 effector genes. Mikologiya i fitopatologiya. 2022. V. 56 (6). P. 441–447. https://doi.org/10.31857/S0026364822060113 (In Russ.)
  74. Волкова Г.В., Гладкова Е.В., Ким Ю.С. и др. (Volkova et al.) Эффективность протравителей Виталон, КС И КЛАД, КС на озимой пшенице против семенной и почвенной инфекции // Рисоводство. 2020. 4(49). С. 49–56.
  75. Горьковенко В.С., Мохова Л.М., Смоляная Н.М. (Gorko-venko et al.) Изменения видового состава грибов рода Septoria на Кубани // Защита и карантин растений. 2005. 3. С. 57.
  76. Гришечкина Л.Д., Долженко В.И., Кунгурцева О.В. (Gri-shechkina et al.) Фунгициды для защиты вегетирующих зерновых колосовых культур // Защита и карантин растений. 2022. 2. С. 37–56.
  77. Засорина Э.В., Тысячник М.А. (Zasorina et al.) Эффективность осеннего применения фунгицидов на посевах озимой пшеницы в условиях Центрального Черноземья // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2020. 9. С. 62–67.
  78. Зеленева Ю.В., Аблова И.Б., Судникова В.П. и др. (Zeleneva et al.) Видовой состав возбудителей септориозов пшеницы в европейской части России и идентификация генов-эффекторов SnToxA, SnTox1 и SnTox3 // Микология и фитопатология. 2022. 56(6). С. 441–447.
  79. Пасько Т.И. (Pasko) Эффективность фунгицидов против септориоза на озимой пшенице. Международный журнал гуманитарных и естественных наук. 2018. 3. С. 147–149.
  80. Пахолкова Е.В., Сальникова Н.Н. (Pakholkova, Salnikova) Частота встречаемости потенциально опасных рас в региональных популяциях Zimoseptoria tritici на посевах пшеницы // Аграрная наука. 2019. Т. 1. С. 99–103.
  81. Санин С.С., Ибрагимов Т.З., Стрижекозин Ю.А. (Sanin et al.) Метод расчета потерь урожая пшеницы от болезней // Защита и карантин растений. 2018. 1. С. 11–15.
  82. Тютерев С.Л. (Tyuterev) Механизмы действия фунгицидов на фитопатогенные грибы. СПб.: Нива, 2010. 170 с.
  83. Тютерев С.Л. (Tyuterev) Проблемы устойчивости патогенов к новым фунгицидам // Вестник защиты растений. 2001. 1. С. 38–53.
  84. Шкель Т.В., Василевская А.В., Гилеп А.А. и др. (Shkel et al.) Молекулярный анализ стерол 14-α-деметилаз (cyp51) патогенных грибов, вызывающих нозокомиальные инфекции // Труды Белорусского Государственного университета. 2013. 8(1). С. 152–158.
  85. Щербакова Л.А. (Shcherbakova) Развитие резистентности к фунгицидам у фитопатогенных грибов и их хемосенсибилизация как способ повышения защитной эффективности триазолов и стробилуринов (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2019. Т. 54. № 5. С. 875–891.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Септориоз пшеницы в Краснодарском крае (возбудитель Zymoseptoria tritici): А – внешний вид пораженного растения; Б – чистая культура гриба на картофельно-глюкозном агаре; В – микропрепарат спор фитопатогена. Фото авторов. Масштаб – 50 мкм

Скачать (522KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024